细胞治疗作为新一代精准医疗的核心技术,在肿瘤、遗传性疾病和退行性疾病治疗中展现出革命性潜力,预计到 2026 年全球市场规模将突破 500 亿美元,年复合增长率超 20%。然而,传统细胞制造工艺依赖离心、平板培养、大型生物反应器等宏观手段,存在分离特异性低、转染效率差、细胞活性受损、批次间差异大等痛点,且单次治疗成本高达数十万美元,严重限制了临床普及。微流控技术凭借微米级流体精准操控能力,为细胞治疗全流程优化提供了全新解决方案。基于 PDMS 芯片、玻璃芯片等材料的微流控平台,可在细胞尺度上实现分离、转染、扩增的一体化操作,大幅提升生产效率并降低成本,成为推动细胞治疗产业化的关键技术引擎。
微流控技术的落地依赖成熟的芯片制备与加工体系,其中 PDMS 微流控芯片因其优异的生物相容性、光学透明性和易加工性,成为细胞治疗领域的主流选择。其制备以软光刻技术为核心,流程包括 SU8 模具制备、PDMS 浇筑、脱模、键合和打孔:首先通过光刻工艺在硅片上制备高精度 SU8 光刻胶模具,将 PDMS 预聚体与固化剂按比例混合后,经 PDMS 浇筑器均匀铺覆于模具表面,在 PDMS 烘箱中加热固化;脱模后借助 PDMS 键合对准平台将 PDMS 基片与玻璃基底精准对齐,通过 PDMS 等离子键合机进行表面活化和永久密封,最后用 PDMS 打孔器开设进出液口,搭配管路系统即可构成完整装置。
除 PDMS 芯片外,玻璃芯片、PMMA 芯片和 COC 芯片则依赖 MEMS 加工技术支撑,涵盖光刻、深硅刻蚀、电子束光刻、阳极键合等核心工艺。专业的微纳加工平台可提供从芯片设计、光刻代工、刻蚀代工到芯片封装的全流程服务,满足不同应用场景的精度需求。同时,表面修饰技术如氨基修饰、PEG 修饰、亲水修饰、醛基化修饰等,可优化芯片表面生物相容性,减少细胞和蛋白质非特异性吸附,确保实验结果的准确性和重复性。

图1 分离、透化与扩增是细胞治疗制剂开发的三个关键步骤。微流控技术能够完成上述每一个过程,同时提升灵敏度、效率和特异性。制作于https://BioRender.com。
细胞治疗的制造流程主要包括目标细胞分离、基因修饰与转染、细胞扩增三大核心步骤,微流控技术在每个环节都展现出传统方法无法比拟的优势。

医学。A)确定性侧向位移,B)惯性,C)电泳,D)介电泳,E)声泳,F)磁泳。图2 面向肿瘤与再生医学细胞和基因治疗进展的被动与主动微流控分离技术
传统细胞分离依赖离心、流式细胞术等方法,存在细胞损伤大、稀有细胞回收率低等问题。微流控细胞分选芯片通过主动与被动操控机制,实现了高效、温和的细胞分离:被动分离技术如确定性侧向位移(DLD)、惯性微流控,通过微通道几何结构调控流体行为,基于细胞大小和变形性实现无标记分离,其中螺旋微流控芯片处理通量可达每分钟 10mL,从全血中分离循环肿瘤细胞(CTCs)的效率达 98%,纯度超 90%;主动分离技术包括介电泳(DEP)、声泳、磁泳,介电泳可根据细胞电学特性分离神经干细胞亚群,纯度达 90% 以上,声泳通过非接触式超声力富集增殖能力更强的间充质干细胞亚群,增殖率提升 20%。
基因转染是细胞治疗的关键步骤,传统方法存在转染效率低、细胞毒性大等问题。微流控转染技术通过物理手段实现细胞膜瞬时通透,可高效递送 DNA、mRNA、CRISPR/Cas9 等多种 cargo:微流控电穿孔芯片利用微电极产生局部均匀电场,在低电压下实现细胞膜穿孔,对原代 T 细胞的 mRNA 转染效率达 90% 以上,细胞活性超 99%,处理速度可达 96 亿细胞 / 小时;液滴微流控机械穿孔技术将细胞与 cargo 包裹在单个液滴中,通过挤压实现细胞膜通透,转染效率达 80%,且试剂用量仅为传统方法的 1/100。此外,声穿孔、磁穿孔、光穿孔等技术也在微流控平台上得到应用,为不同类型细胞的基因修饰提供了多样化选择。
细胞扩增需要获得足够数量且功能完整的治疗细胞,传统 2D 培养易导致细胞分化、功能丧失。微流控 3D 细胞培养芯片可模拟体内三维微环境,实现细胞的高密度、均一性培养:微流控生物反应器通过灌注培养系统,维持恒定的营养浓度和气体交换速率,使 CAR-T 细胞扩增倍数达传统方法的 2-3 倍,所需病毒载体用量减少 90%;类器官芯片、器官芯片等平台能够精准调控培养基成分、氧气浓度和机械刺激,成功构建肝、肾、脑等多种器官模型,不仅可用于干细胞定向分化,还能为药物筛选和疾病研究提供更接近人体的实验平台。同时,微流控技术可实现细胞制造过程的实时无标记质量控制,监控细胞活性、表型和功能,确保治疗产品的一致性和安全性。
肿瘤免疫治疗是细胞治疗的核心领域,微流控技术在 CAR-T、NK、树突状细胞等免疫细胞的制造中发挥着关键作用。在 CAR-T 细胞制造中,集成式微流控平台可实现从 T 细胞分离、激活、转染到扩增的全流程自动化,将生产周期从传统的 2-3 周缩短至 7-10 天,同时降低人工操作带来的污染风险。NK 细胞因无需抗原致敏且安全性高,成为免疫治疗的新热点,微流控惯性分离芯片仅需 8μL 全血即可获得纯度 80.4% 的 NK 细胞,回收率达 87%,远高于传统离心法的 60%,且分离后的细胞毒性保持完整。树突状细胞疫苗制备中,微流控机械穿孔技术可将抗原高效递送至树突状细胞,所需抗原浓度降低 10 倍,诱导的 T 细胞免疫反应更强,在动物实验中显著延长了肿瘤模型的生存期。

图3 用于细胞和基因治疗(涵盖基因编辑/调控、过继性细胞治疗和再生医学)中货物胞内递送的病毒与非病毒技术。
再生医学利用干细胞修复受损组织和器官,微流控技术为干细胞的分离、分化和组织工程提供了强大工具。间充质干细胞(MSCs)是再生医学中应用最广泛的干细胞类型,确定性侧向位移芯片从 2.5mL 骨髓穿刺液中分离 MSCs 仅需 20 分钟,回收率达 41%,是传统离心法的 3 倍以上。在心脏再生领域,微流控流体聚焦技术可实现纳米线的 75% 定向排列,构建具有各向异性结构的心肌补片,模拟天然心肌的排列方式,显著改善心肌梗死动物的心脏功能和电传导。在神经再生方面,介电泳微流控芯片可无标记分离具有不同分化潜能的神经干细胞亚群,提高神经修复的精准性;液滴微流控芯片可制备载细胞水凝胶微球,用于注射式细胞治疗,显著提升细胞存活率和治疗效果。

图4微流体设备和平台,以改善肿瘤学应用的细胞制造。A)用于高通量基因转染人类原代T细胞的基于液滴的机械操作。经参考文献125版权2021美国化学学会许可转载。B)与孔板和液体处理机器人集成的微流体设备中的平行板电穿孔,用于高通量转染和扩增。转载自参考文献128版权2024 Springer Nature BV。C)具有电穿孔电极和高导电性鞘流的简单微流体通道,在原代T细胞的高通量体积下具有90%的转染效率。转载自参考文献130版权2023 John Wiley and Sons。D)具有片上离心的惯性微流体设备,可从全血样本中分离NK细胞。转载自参考文献135版权2023美国化学学会。E)多维双螺旋,用于使用惯性微流体分离活化的T细胞,用于CAR-T细胞制造。转载自参考文献131版权2024美国化学学会。f)灌注微流控生物反应器为临床相关CAR-T细胞扩增管理微环境。转载自参考文献126版权2024 Springer Nature。

图5 用于推动再生医学细胞与基因治疗发展的微流控装置。A)基于命运偏向性对神经多能干细胞进行分选的流体动力与介电泳装置。转载自参考文献142(知识共享署名协议)。B)用于将人体体细胞重编程为多能性的微流控装置,其转染效率比标准孔板提高50倍¹⁴⁶。C)用于在水凝胶中对纳米线进行高通量排列以制备心脏补片的鞘流技术¹⁴⁸。D)用于治疗心肌梗死的载细胞可注射水凝胶的液滴微流控技术¹⁴⁹。E)用于富集骨髓间充质干细胞以增强其增殖能力的声泳分离技术¹⁵⁴。F)用于从骨髓抽吸物中高通量分离间充质干细胞的确定性侧向位移技术。经英国皇家化学会许可改编自¹⁵¹。G)通过以下方式对骨源性人骨髓间充质干细胞进行机械穿孔:i)在T型接头末端设置凹腔以通透细胞膜,并在ii)滞止点和iii)下游位置诱导细胞拉伸。经参考文献155许可转载。
尽管微流控技术在细胞治疗中展现出巨大潜力,但其大规模临床应用仍面临诸多挑战。首先是规模化生产难题,目前单台微流控设备的细胞处理能力约为每天 5×10^6 个,距离临床需求的每天 10^8 个存在数量级差距,需要通过多芯片并行化设计和模块化集成来提升通量。其次是成本问题,虽然微流控技术可减少 70% 以上的试剂消耗,但初始设备投入和芯片开发成本较高,需要通过标准化生产和规模化制造来降低成本。此外,微流控系统的监管标准和验证体系尚未完善,需要与监管机构共同探索符合 GMP 要求的生产流程。
未来,微流控技术将朝着集成化、自动化、智能化方向发展。数字微流控、器官芯片、单分子检测等技术的融合,将实现细胞制造的全流程精准控制;3D 打印技术在微流控芯片制造中的应用,将进一步降低设计门槛和生产成本;人工智能与大数据的结合,将优化工艺参数并实现生产过程的实时监控。随着微流控芯片定制、微流控芯片代工服务的不断完善,以及 MEMS 加工技术的持续进步,微流控技术有望在未来 3-5 年内成为细胞治疗生产的主流平台,推动细胞治疗从 “贵族疗法” 走向普惠医疗,为更多患者带来治愈希望。
参考文献:DOI: 10.1039/d5lc00492f
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